如何测定植物水势

植物细胞水势组成

典型植物细胞水势（Ψw）组成为：Ψw=Ψm+Ψs+Ψp（ψm为衬质势，Ψs为渗透势，Ψp为压力势）。

衬质势、渗透势、压力势

衬质势（Ψm）是由于细胞胶体物质亲水性和毛细管对自由水的束缚而引起的水势降低值，对已形成中心大液泡的细胞含水量很高，Ψm只占整个水势的微小部分，通常一般忽略不计。渗透势（Ψs） 由于溶质的存在而使水势降低的值称为渗透势或溶质势（ψs），溶液渗透势决定于溶液中溶质颗粒总数，以负值表示。 如果溶液中含有多种溶质，则其渗透势是各种渗透式的总和。压力势（Ψp）：由于细胞吸水膨胀时原生质向外对细胞壁产生膨压，而细胞壁向内产生的反作用力——壁压使细胞内的水分向外移动，即等于提高了细胞的水势。由于细胞壁压力的存在而引起的细胞水势增加的值称为压力势，一般为正值。当细胞失水时，细胞膨压降低，原生质体收缩，压力势则为负值。当刚发生质壁分离时压力势为零。细胞的水势不是固定不变的，Ψs、Ψp、Ψw随含水量的增加而增高；反之，则降低，植物细胞颇似一个自动调节的渗透系统。

植物组织水势的测定

植物水势的测定先用折射仪法再用小液流法。

折射仪测定法会因为植物的细胞壁而产生一定的误差，只能得到一个不准确的值。根据这个值，就可以缩小蔗糖浓度梯度的阈值范围，从而更快速准确的测得水势。

《植物生理学实验》分7个部分，有28个实验，涉及植物生理学相关实验的基本原理、基础知识、基本实验技能和拓展应用，内容包括植物的细胞生理、植物的水分及矿质营养、植物的光合和呼吸作用、有机物代谢、植物生长物质、植物生长发育、植物的逆境生理。

1、取干燥洁净的试管16支，分成甲、乙两组，分别插在试管架相应的位置。甲组试管中分别加质量摩尔浓度为0.05~0.40mol/kg的8种浓度的CaCl2溶液之一，各4ml左右，乙组试管用同样的方法加入8种浓度的CaCl2溶液各0.5ml，甲、乙两组试管分别塞上相应的软木塞备用。

2、选取均匀一致的植物叶片8~10片，叠在一起，用打孔器打取叶圆片8~10片，放入乙组试管内的一种浓度中，使叶片浸入溶液，塞紧软木塞，平衡20min以上。期间多次摇动试管，以加速水分平衡。

3、到预定时间后，在乙组每一试管中用解剖针放入微量甲烯蓝粉末，摇匀，溶液变蓝。

4、用毛细管在乙组试管中吸取有色溶液少许，插入装有同样浓度溶液的甲组试管中，毛细管尖端放在溶液中部，轻轻挤出有色溶液1小滴，小心取出毛细管（勿搅动有色液滴）。观察有色小液滴的升降情况。若液滴下降，表示溶液浓度变大，植物组织吸水，组织水势低于溶液渗透势；若液滴上升，表示乙组相应试管中溶液浓度变小，植物组织失水，组织水势高于溶液渗透势；若液滴不动，则表示珐憨粹窖诔忌达媳惮颅植物组织既不失水也不吸水，组织水势与溶液渗透势相等，该溶液的渗透势即为植物组织水势。若前一浓度中液滴下降，后一浓度中液滴上升，则用二者浓度的平均值。

分别测定不同浓度中有色液滴的升降，找出与组织水分势相当的浓度，根据原理公式（14-1）计算出组织的水势。

5、测定并记录不同处理植物组织的水势，分析各自的水分状况

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